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动物代谢系统

如果您对该产品感兴趣的话,可以
产品名称: 动物代谢系统
产品型号: Oxylet
产品展商: 动物代谢监测系统
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简单介绍

Panlab动物代谢系统Oxylet System是公认的研究代谢行为的最好的系统之一,全球最大的动物实验仪器供应商Harvard和Stoelting,都指定Panlab的动物代谢测量分析系统Oxylet系统为唯一的代谢研究设备,推荐给研究者。动物代谢测量分析系统由不同的传感器组成,并为每一种动物都整合了大量的信息。动物代谢测量分析系统同时大鼠和小鼠在笼的居住环境中监测几组生理和行为参数。


动物代谢系统  的详细介绍

型号:Oxylet
品牌:panlab



动物代谢系统由不同的传感器组成,并为每一种动物都整合了大量的信息。动物代谢测量分析系统可以自动地,无干涉地长期对大量的动物进行监测(24小时甚至连续几天)。动物代谢测量分析系统同时大鼠和小鼠在笼的居住环境中监测几组生理和行为的参数。
 
 
动物代谢系统Oxylet 是一套模块化的系统,研究者可选择性地对动物的呼吸代谢(O2消耗和CO2产出)、饮食与饮水量、运动活性和站立行为等进行分别监测,并将研究数据结合起来进行分析。

    动物代谢系统Oxylet的动物笼采用Allentown Caging Equipment(ACE)生产的标准动物笼体并进行进一步加工。笼体耐高温高压处理,便于消毒清理。笼体以外的其它配件:密闭笼盖、网格地板、饮食和饮水槽等,都可以单独定制。特别是,独特设计的密闭笼盖可以改变动物笼的空间,使一套呼吸检测系统可以同时适用于大鼠和小鼠实验。

动物代谢系统Oxylet可监测参数包括

饮水与喂食(数量和模式)

新陈代谢的表现(氧气的消耗和二氧化碳的排出)

在居住笼中的活动

转轮跑台等活动(可选)

1.饮食与饮水监测:

   Panlab自主研发的灵敏重力传感技术取代了传统的外置电子秤来对动物饮食饮水量进行监测。传感器、电信号放大器和数模转换器等灵敏元件被完全整合在笼体下部的金属底座(Platform)内。Platform面板提供了完整的操作按钮,并有LED显示屏显示当前的数据。饮食、饮水槽的重量变化,通过巧妙设计的导力支架被平台内的传感器接收,其中食物和水的测量精度分别高达0.02g和0.01g!实际测量中的系统扰动误差值也分别控制在0.02g和0.01ml以内!饮食饮水监测达到如此高的精确度和稳定性在市场中首屈一指!
  
饮食槽和饮水槽分别采用了巧妙的回收设计,将动物进食过程中泄漏的食物和水回收并从真实数据中自动去除,大大提高了长期记录的数据精度。

综合以上性能特点,使Panlab Oxylet系统可以真正用于小鼠的摄入代谢长期监测。

为了满足特定的研究需要,如研究动物对不同实物的偏好和饮食模式等,其中的饮食和饮水槽还可以分别互相替换,例如改装两个饮食槽、两个饮水槽。




2.呼吸代谢检测: 

   动物代谢系统Oxylet呼吸代谢的测量原理是通过检测动物呼吸气体中O2和CO2成分的变化间接的计算出动物能量的消耗,   这也是目前实验室用于啮齿类动物能量代谢检测常用的方式。
  
 动物代谢测量分析系统Oxylet的气体流量控制器保证在密闭笼体中维持恒定的空气流量,流速可以在0至20L/min内连续精确地设定。流速的精确调节,保证了无论动物处于剧烈运动还是休眠状态,都可以得到十分有效的呼吸代谢数据。该流量控制器一般为2通道或4通道设计,例如一款4通道Oxylet流量控制器可以独立地分别控制4个笼体的空气流动。通过独特的笼盖设计,使笼体内的空间根据实验动物的不同而改变,分别适用于大鼠和小鼠。

  
     动物代谢系统主要特点: 

先进化设计动物代谢研究系统

市面最变通的体系

硬软件设计友好,操作简便

标准饲养笼提供动物舒适环境,使其笼内行为正常

所有饲养笼无需作任何修改

小鼠与大鼠组合系统,可进行全面的研究

饮水取食行为

尿液与粪便的产生量

间接量热,可对动物呼吸代谢进行研究(包括O2消耗,CO2产生,呼吸交换率,笼内温度变化等)

动物在笼内的运动监测和记录

转轮运动

连续数日进行短期/长期监测

能多只动物同时检测

得到食物和液体消耗量,精确到0.01gml,同时能记录排粪和排尿量


系统配合动物代谢测量分析系统软件可进行实验设计、数据记录和分析过程。

动物代谢监测系统有自己的标准组成部分。这些部分模块化地结合和组成起来,并根据您不同的需要为您的科研提供有效的工具


 


经过流量控制的气流被采样输入至系统中最核心的部件——气体成分分析仪。分析仪中安放了灵敏的光电二极管氧气探头、和红外感应二氧化碳探头来精准监控气体成分的改变,采集精度达到最高的0.01%。该系统还能在一些特殊的研究场合使用,如新生大鼠的微弱呼吸代谢检测、于Treadmill跑步机运动同步的能量消耗检测等。

Oxylet软件能自动计算平均氧气消耗(VO2)、平均二氧化碳排量(VCO2)、以及呼吸商(RQ=VCO2/VO2),并自动按以下公式推算换能率:
EE=(3.815+(1.232xRQ))xVO2x1.44

• 热量检测仪能测量O2 消耗量(VO2), CO2产生量 (VCO2), 呼吸交换率(RER), 热量的产生以及温度。
• 量热计直接测量和储存实验时间日期,笼内O2 和 CO2 浓度,空气流速和温度(以每个笼为单位),计算VO2, VCO2,RER 和 热量。
• 量热计特殊的动物笼能连接空气进气管,出气管,独立的样品连接以及可选的温度传感器。
• 呼吸代谢检测仪高精度传感器能准确测量O2, CO2 浓度,温度和气流控制。


3.运动活性和站立(Rearing)监测

   动物代谢测量分析系统Oxylet系统通过位于笼体底部四脚的振动传导装置以及位于Platform上相应位置的运动传感器感受动物运动活性;通过架设独立的一对红外感应条来监测动物站立行为。平台内的运动传感器能感受到动物非常微小的活动,可精确地用于小鼠活动监测。红外感应条作为附加模块,可以为有站立行为研究需要者选购。动物活动性数据可以直接导入计算机中由专门的软件模块METAACT分析和生成数据图表,也可以在每个笼子下方Platform的LED显示屏中实时查看到。

两种运动传感器:

-- 在X,Y,Z三维方向上,红外光柱传感器支架包围饲养笼

---在笼盖顶端,安装红外热传感器,用于监测总运动

 

为实现运动测量,动物笼放在红外光柱传感器支架内。光柱传感器安装在X和Y方向上,此外可以补充可调整的高度Z(垂直于X),用于站立指示器。光柱被截断的状态随着动物的运动而变化。每个变化都将登记为一次计数。这意味着如果永久性截断光柱将不被计数。

 

通过安装在笼盖上的红外位移传感器,能方便的测量饲养笼内的大小鼠或其他小型实验动物的总运动。可以在任何光线条件下测量运动。测量甚至可以在全黑的情况下进行。传感器记录一个或多个物体运动,是通过感应体热图进行的,也就是说通过红外辐射,然后将其空间位移作为时间的函数。这种方法能确定笼内的运动并进行定量。这甚至能记录一个只历时几个毫秒的运动。



动物代谢系统订购信息

您可以任意定制满足您研究需要的Oxylet代谢检测系统

您需要多少只动物同时检测?其中多少只大鼠、多少只小鼠?
您需要检测那些数据?其中多少只需要呼吸代谢检测?多少只需要饮食饮水监测?
您需不需要为特殊形态的食物或饮料(粉状食物、粘稠液体)制定饮水槽或饮食槽?
您需不需要开展2种食物或2种饮料的偏好研究?
您需不需要监测动物的站立行为?
您需不需要用于跑步机TreadMill或者用于新生大鼠的呼吸代谢监测?
非常期待您告诉我们您的需求!

 
 
使用我们的动物代谢测量分析系统发表的文章:

 

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  • Bargut TC et al. (2014) Effects of a diet rich in n-3 polyunsaturated fatty acids on hepatic lipogenesis and beta-oxidation in mice. Lipids. 2014 May;49(5):431-44. (mice, Brazil)
  • Bojados M et al (2014) The long-term consequences of the exposure to increasing gravity levels on the muscular, vestibular and cognitive functions in adult mice. Behav Brain Res. 2014 Feb 7. In press (treadmill, mice, France)
  • Cappelli AP et al. (2014) Taurine-induced insulin signalling improvement of obese malnourished mice is associated with redox balance and protein phosphatases activity modulation. Liver Int. 2014 May;34(5):771-83. (mice, Brazil)
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  • Nunes-Silva A et al (2014) Treadmill Exercise Induces Neutrophil Recruitment into Muscle Tissue in a Reactive Oxygen Species-Dependent Manner. An Intravital Microscopy Study. PLoS One. 2014 May 5;9(5):e96464. (rat, Brazil)
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  • Coutinho GVP et al. (2013) Intrauterine protein restriction combined with early postnatal overfeeding was not associated with adult-onset obesity but produced glucose intolerance by pancreatic dysfunction. Coutinho et al. Nutrition & Metabolism 2013, 10:5. (rat, Brazil)
  • Fortunado G et al. (2013) Recovery of pulmonary structure and exercise capacity by treatment with granulocyte-colony stimulating factor (G-CSF) in a mouse model of emphysema. Pulmonary Pharmacology & Therapeutics. In press (mice, treadmill, Brazil).
  • Gaigé S et al. (2013) Modification of energy balance induced by the food contaminant T-2 toxin: A multimodal gut-to-brain connection. Brain Behav Immun. 2013 Dec 16. In press (France)
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  • Ikonomov OC et al. (2013) Muscle-specific Pikfyve gene disruption causes glucose intolerance, insulin resistance, adiposity and hyperinsulinemia but not muscle fiber-type switching. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2013 Jul 1;305(1):E119-31. (mouse, USA)
  • Kim HJ et al. (2013) Central administration of metformin into the third ventricle of C57BL/6 mice decreases meal size and number and activates hypothalamic S6 kinase. American Journal of Physiology - Vol. 305no. R499-R505. (mouse, Korea)
  • Kim HJ et al. (2013) Metformin decreases meal size and number and increases c-Fos expression in the nucleus tractus solitarius of obese mice. Physiology & Behavior, Volumes 110–111. (mouse, Korea)
  • Kim YJ et al. (2013) Longterm supplementation of honokiol and magnolol ameliorates body fat accumulation, insulin resistance, and adipose inflammation in highfat fed mice. Molecular Nutrition & Food Research, Volume 57, Issue 11, pages 1988–1998 (mouse, Korea)
  • Larocca TF et al. (2013) Transplantation of adipose tissue mesenchymal stem cells in experimental chronic chagasic cardiopathy. Arq. Bras. Cardiol. vol.100 no.5 (mouse, Brazil)
     
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